
تعداد نشریات | 13 |
تعداد شمارهها | 622 |
تعداد مقالات | 6,501 |
تعداد مشاهده مقاله | 8,616,414 |
تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 8,206,349 |
تاثیر خصوصیات شیمیایی خاک بر همزیستی سیب و انگور با قارچهای میکوریز آربوسکولدار | ||
مجله مدیریت خاک و تولید پایدار | ||
مقاله 8، دوره 7، شماره 1، فروردین 1396، صفحه 115-125 اصل مقاله (440.97 K) | ||
نوع مقاله: مقاله کامل علمی پژوهشی | ||
شناسه دیجیتال (DOI): 10.22069/ejsms.2017.9841.1581 | ||
نویسندگان | ||
مهدی صدروی* 1؛ زهره عوض زاده مهریان2 | ||
1هیئت علمی/ دانشگاه یاسوج | ||
2دانشجوی کارشناسی ارشد/ دانشگاه یاسوج | ||
چکیده | ||
سابقه و هدف: قارچهای میکوریز آربوسکولدار که همزیست اجباری طبیعی ریشه 80 درصد گیاهان هستند، نقش مهمی در افزایش جذب آب و بعضی عناصرغذایی بهویژه فسفر و تولید پایدار محصولات زراعی و باغی دارند. همزیستی تعدادی از این قارچ-ها با ریشه انگور گزارش شده است. همچنین تلقیح بعضی از آنها به ریشه نهالهای سیب باعث افزایش رشد آنها شده است. این پژوهش به منظور بررسی حضور آنها در باغهای سیب و انگور مناطق بویراحمد و دنا و تاثیر خصوصیات شیمیایی خاک بر این رابطه همزیستی انجام شد. مواد و روشها: شصت نمونه از ریزوسفر سیب و انگور این مناطق، جمعآوری شدند. هاگهای قارچهای میکوریز آربوسکولدار به روش الکتر و سپس سانتریفیوژ کردن در محلول شکر جداسازی و جمعیت هاگها در 100گرم ریزوسفر شمارش شد. برای بهدست آوردن هاگهای سالم این قارچها کشتهای تله گلدانی با ذرت، برای هر نمونه در گلخانه برای 14 هفته مستقر شدند. قارچهای هر نمونه با مطالعه و اندازهگیری خصوصیات ریختی، هاگهای جداسازی شده از ریزوسفر این گیاهان و کشتهای تله گلدانی، شناسایی گردیدند. درصد کلنیزاسیون طول ریشه سیب و انگور در هر نمونه پس از رنگبری آنها با محلول پتاسیم 10 درصد و رنگ آمیزی آنها با محلول لاکتوفنلآنیلینبلو محاسبه گردید. بافت، اسیدیته، هدایت الکتریکی و میزان فسفر خاک هر نمونه، تعیین شدند. همچنین ضرایب همبستگی خصوصیات شیمیایی خاک با جمعیت هاگهای این قارچها و درصد کلنیزاسیون طول ریشه در هر گیاه نیز محاسبه گردیدند. یافتهها: قارچهای میکوریز آربوسکولدار در تمام نمونهها حضور داشتند و میانگین جمعیت هاگ این قارچها در 100 گرم ریزوسفر، تنوع آنها و درصد کلنیزاسیون طول ریشه، در سیب به ترتیب 1474، 3/3 و 3/67 و در انگور 1045، 8/2 و 4/40 بودند. چهارده گونه از این قارچها متعلق به هشت جنس، به اسامی: Funneliformis constrictum, F. caledonium, F. mosseae, F. geosporum, Glomus deserticola, G. microaggregatum, Rhizophagus fasciculatus, R. clarus, Claroideoglomus claroideum, C. etunicatum, Scutellospora calospora, Entrophospora infrequens, Acaulospora bireticulata و Ambispora gerdemannii در نمونهها شناسایی شدند. گونهی F. mosseae با 6/76 درصد بیشترین فراوانی را داشت. بافت خاک نمونهها از رسی تا لومی، متغیر بود. میزان فسفر، اسیدیته و هدایت-الکتریکی خاک با جمعیت هاگ قارچهای میکوریزی آربوسکولار و درصد کلنیزاسیون طول ریشه این گیاهان همبستگی منفی داشتند. ضریب همبستگی جمعیت هاگ این قارچها در خاک ریزوسفری سیب، با اسیدیته، هدایت الکتریکی و فسفر خاک به ترتیب 02/0-، 42/0- و 04/0- و در انگور 45/0-، 30/0- و 01/0- بود. همچنین ضریب همبستگی درصد کلنیزاسیون طول ریشه سیب با اسیدیته، هدایت الکتریکی و فسفر خاک به ترتیب 22/0-، 19/0- و 38/0- و در انگور 44/0-، 15/0- و 16/0- بود. نتیجهگیری: حضور این قارچها در تمام نمونهها حاکی از نیاز این گیاهان به این همزیستی برای رشد و نموطبیعی است. جمعیت هاگ این قارچها، تنوع آنها و درصد کلنیزاسیون طول ریشه، در سیب بیشتر از انگور بود. فراوانی بیشتر قارچ F. mosseae ، حاکی از توانایی بیشتر آن در برقراری رابطه همزیستی با این گیاهان است. همبستگی منفی میزان فسفر، اسیدیته و هدایتالکتریکی خاک با جمعیت هاگ قارچهای میکوریز آربوسکولدار و درصد کلنیزاسیون طول ریشه، نشان میدهد که توانایی برقراری رابطهی همزیستی این قارچها با ریشه این گیاهان و میزان تکثیر آنها در خاکهای با فسفر و شوری کم و اسیدیته خنثی تا کمی قلیایی بیشتر است. بنابراین میتوان کاربرد این قارچها را در این گونه خاکها برای بهبود رشد و محصول این گیاهان، پیشنهاد کرد. | ||
کلیدواژهها | ||
اسیدیته؛ فسفر؛ شوری؛ Funneliformis؛ Glomus | ||
مراجع | ||
1.Abdel Latef, A.A.H., and Miransari, M. 2014. The role of arbuscular mycorrhizal fungi in alleviation of salt stress. P 23-38, In: M. Miransari (Ed.), Use of Microbes for the Alleviation of Soil Stresses, Vol. 2: Alleviation of Soil Stress by PGPR and Mycorrhizal Fungi. Springer Science+Business Media New York. 2.Abubacker, M.N., Visvanathan, M., and Srinivasan, S. 2014. Impact of pesticides on AMF spore population and diversity in banana (Musca spp.) plantation soils. Biolife. 2: 4. 1279-1286. 3.Allen, M.F. 1991. The Ecology of Mycorrhizae. London, Cambridge University Press, UK, Pp: 32-40. 4.Allen, M.F. 1992. Mycorrhizal functioning. Chapman and Hall Publishing. New York, Routledge, USA, Pp: 301-332. 5.Amijee, F., Tinker, P.B., and Stribley, D.P. 1989. The development of endomycorrhizal root systems. VII. A detailed study of effects of soil phosphorus on colonization. New Phytologist. 111: 435-446. 6.Barin, M., Aliasgharzadeh, N., and Samadi, A. 2002. Influence of mycorrhization on the mineral nutrition and y ield of tomato under sodium chloride and salts mixture induced salinity levels. Soil and Water Sciences. 20: 1. 94-105. (In Persian) 7.Day, P.R. 1965. Particle fractionation and particle-size analysis. P 545-566, In: C.A. Black (Ed.), Methods of Soil Analysis. Part I. Monog. Ser. No. 9. ASA. Madison, WI. 8.Douds, D.D., and Schenck, N.C. 1990. Relationship of colonization and sporulation by VA mycorrhizal fungi to plant nutrient and carbohydrate contents. New Phytologist. 116: 621-627. 9.Duke, E.R., Johnson, C.R., and Koch, K.E. 1986. Accumulation of phosphorus, dry matter and betaine during NaCl stress of split-root citrus seedlings colonize with vesicular arbuscular mycorrizal fungion on zero, one or two halves. New Phytologist. 104: 85-110. 10.Duponnois, R., Colombet, A., Hien, V., and Thioulouse, J. 2005. The mycorrhizal fungus Glomus intraradices and rock phosphate amendment influence plant growth and microbial activity in the rhizosphere of Acacia holosericea. Soil Biology and Biochemistry. 37: 1460-1468. 11.Gaur, A., and Adholeya, A. 2002. Arbuscular mycorrhizal inoculation of five tropical fodder crops and inoculums production in marginal soil amended with organic matter. Biology and Fertility of Soils. 35: 214-218. 12.Gerdemann, J.W., and Nicolson, T.H. 1963. Spores of mycorrhizal Endogone species extracted from soil by wet-sieving and decanting. Transactions of the British Mycological Society. 46: 235-244. 13.Hajian, M., and Abbasi, M. 2005. Variation of spores of vesicular arbuscular mycorrhiza population in pistachio natural forest soil in north of Khorassan. J. Sci. Technol. Agric. Natur. Resour. 8: 4. 77-86. (In Persian) 14.Hirrel, M.C., and Gerdemann, J.W. 1980. Improved growth of onion and bell pepper in saline soils by two vesicular arbuscular mycorrhizal fungi. J. Soil Sci. Soc. Amer. 44: 654-655. 15.Isobe, K., Aizawa, E., Iguchi, Y., and Ishii, R. 2007. Distribution of arbuscular mycorrhizal fungi in upland field soil of Japan 1. Relationship between spore density and the soil environmental factor. Plant Production Science. 10: 1. 122-128. 16.Jenkins, W.R. 1964. A rapid centrifugal-flotation technique for separating nematodes from soil. Plant Disease Reports. 48: 692. (Short report) 17.Jensen, A., and Jakobsen, J. 1980 .The occurrence of vesicular arbuscular mycorrhiza in barley and wheat grown in some Danish soil with different fertilizer treatment. Plant and Soil. 55: 403-414. 18.Juniper, S., and Abbott, L. 1993. Vesicular arbuscular mycorrhizas and soil salinity. Mycorrhiza. 4: 45-57. 19.Menge, J.A., Steirle, D., Bagyaraj, D.J., Johnson, E.L.V., and Leonard, R.T. 1978. Phosphorus concentrations in plants responsible for inhibition of mycorrhizal infection. New Phytologist. 80: 575-578. 20.Meyer, A.H., Valentine, A.J., Botha, A., Archer, E., and Louw, P.J.E. 2005. Young grapevine response and root colonization following inoculation with arbuscular mycorrhizal fungi. J. Enol. Viticul. 25: 1. 26-32. 21.Mosse, B. 1973. Plant growth responses to vesicular–arbuscular mycorrhiza. X. Response of Stylosanthes and maize to inoculation in unsterile soils. New Phytologist. 78: 277-288. 22.Olsen, S.R., and Sommers, L.E. 1982. Phosphorus. Methods of Soil Analysis. Part 2. American Agronomy Society, Madison, Wisconsin, USA, Pp: 403-430. 23.Page, A.L., Miller, R.H., and Keeney, D.R. 1982. Methods of Soil Analysis. Part 2, 2nd ed., American Agronomy Society, Madison, Wisconsin,USA, Pp: 400-403. 24.Phillips, J.M., and Hayman, D.S. 1970. Improved procedures for clearing roots and staining parasitic and vesicular-arbuscular mycorrhizal fungi for rapid assessment of infection. Transactions of the British Mycological Society. 55: 158-161. 25.Plenchette, C., Furlan, V., and Fortin, J.A. 1981. Growth stimulation of apple trees in unsterilized soils under field conditions with VA mycorrhiza inoculum. Can. J. Bot. 59: 2003-2008. 26.Schenck, N.C., and Perez, Y. 1990. Manual for the Identification of VA Mycorrhizal Fungi. Synergistic Publications, Gainesville, Florida, USA, 286p. 27.Schubert, A., and Lubraco, G. 2000. Mycorrhizal inoculation enhances growth and nutrient uptake of micro propagated apple rootstocks during weaning in commercial substrates of high nutrient availability. Applied Soil Ecology. 15: 113-118. 28.Sedaghati, A., Khosravi, A., Mohammadi Goltapeh, A., Minasian, V., and Rezaei Danesh, Y. 2008. Isolation and identification of grape root symbiotic arbuscular mycorrhizal fungi in the provinces of Khorasan and Qazvin. Proceedings of the 18th Iranian Plant Protection Congress. BuAliSina University of Hamedan, 643p. (In Persian) 29.Sieverding, E. 1989. Ecology of VAM fungi in tropical agrosystems. Agriculture Ecosystem and Environment. 29: 369-390. 30.Waterer, D., and Coltman, R. 1989. Response of lettuce to pre- and post-transplant phosphorus and pre-transplant inoculation with a VA-mycorrhizal fungus. Plant and Soil. 117: 151-156. | ||
آمار تعداد مشاهده مقاله: 1,472 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 696 |