
تعداد نشریات | 13 |
تعداد شمارهها | 623 |
تعداد مقالات | 6,503 |
تعداد مشاهده مقاله | 8,655,722 |
تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 8,259,435 |
تاثیر قارچ Rifai Trichoderma harzianum بر زندهمانی، رشد و تغذیه نهالهای فندق جنگلی در شرایط عرصه جنگل فندقلو | ||
پژوهشهای علوم و فناوری چوب و جنگل | ||
دوره 31، شماره 1، فروردین 1403، صفحه 43-61 اصل مقاله (718.95 K) | ||
نوع مقاله: مقاله کامل علمی پژوهشی | ||
شناسه دیجیتال (DOI): 10.22069/jwfst.2024.22116.2055 | ||
نویسندگان | ||
یونس رستمی کیا* 1؛ محمد متینی زاده2؛ احمد رحمانی3 | ||
1استادیار پژوهش مرکز تحقیقات و آموزش کشاورزی و منابع طبیعی استان اردبیل سازمان تحقیقات آموزش و ترویج کشاورزی اردبیل ایران | ||
2دانشیار پژوهش، بخش تحقیقات جنگل، مؤسسه تحقیقات جنگلها و مراتع کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، تهران، ایران | ||
3دانشیار پژوهش، بخش تحقیقات جنگل، مؤسسه تحقیقات جنگلها و مراتع کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، تهران، ایران. | ||
چکیده | ||
سابقه و هدف: فندق جنگلی (Corylus avellana L.) از خانواده Corylacesae جزء گونههای پیشگام در مراحل اولیه توالی جنگل فندقلو است و نقش بسیار مهمی در احیای جنگلهای مخروبه دارد. متاسفانه در سالهای اخیر تبدیل کاربری، چرایدام، آتشسوزی و قطع درختان از عوامل موثر در تخریب این جنگل با ارزش بوده است. درصد زنده مانی و رشد رویشی اندک در سالهای اولیه نهال فندق افزایش هزینههای تولید نهالهای دانهرست در نهالستان و هم تأخیر در برنامههای جنگلکاری را سبب میشود. این پژوهش با هدف تاثیرT. harzianum بر استقرار و بهبود مشخصههای رشد و تغذیهای برگ نهالهای فندق در شرایط عرصه انجام شد. مواد و روشها: در اوایل اردیبهشت 1396 در نهالستان فندقلوی اردبیل، خاک اطراف ریشه نونهالهای گلدانی فندق، تولید شده از سه مبداء فندقلو (جنگل فندقلوی اردبیل)، مکش (جنگل آقاولر گیلان) و مکیدی (ارسباران) با قارچT. harzianum مایهزنی شدند. سپس، در آبان 1397، نهالهای یکساله فندق به اراضی زراعی حاشیه جنگل فندقلو منتقل شدند و با توجه به دو فاکتور فوق (مایهزنی، مبدا بذر) در قالب طرح بلوکهای کامل تصادفی با سه تکرار 25 تایی در شرایط دیم کشت شدند و درصد زندهمانی، رویش قطر یقه، ارتفاعی و تغدیهای نهالهای فندق درطی چهار سال اندازه گیری شد. یافتهها: نتایج پس از چهار سال نشان داد همه مشخصههای مورد بررسی تحت تاثیر تیمار تلقیح قارچ قرار گرفتند. اثر اصلی مبداء نهال و قارچ بر همه صفات مورد بررسی در سطح پنج و یک درصد معنیدار بود. اثر متقابل مبداء نهال× تلقیح قارچ بر صفات درصد زندهمانی، زیتوده ریشه در سطح یک درصد و برای رویش قطری یقه و ارتفاعی و زیتوده ساقه و برگ و عناصر تغذیهای برگ نهالهای فندق در سطح خطای یک و پنج درصد معنیدار بود. طوریکه که نهالهای تلقیح شده هر سه مبداء، از لحاظ همه صفات مورد بررسی دارای بیشترین مقدار در مقایسه با نهالهای شاهد بودند. بیشترین مقدار اندازه صفات مورد مطالعه به نهالهای مبداء فندقلو در تلقیح با قارچT. harzianum اختصاص داشت. طوریکه در این نهالها زندهمانی 8/65 درصد، رویش قطر یقه 2/52 درصد، رویش ارتفاع 6/54 درصد، زیتودههای خشک ریشه، ساقه و برگ بهترتیب 603/48، 5/46 و 40/37 درصد و غلظت عناصر غذایی برگ شامل نیتروژن 81/27 فسفر 23/23، پتاسیم 7/34 درصد نسبت به نهالهای مایهزنی نشده مبدا فندقلو افزایش داشت. اگرچه پاسخ نهالهای از نظر صفات مورد مطالعه با هم متفاوت بود. نهالهای فندق با مبداء فندقلو و مکش از لحاظ صفات مورد مطالعه در مقایسه با مبداء مکیدی برتر بودند. نتیجهگیری: برای تولید نهال قوی فندق جهت جنگلکاری در اراضی مستعد فندقلوی میتوان از دو مبداء فندقلو و مکش استفاده کرد. در نهایت میتوان با توجه به یافتههای این تحقیق، از T. harzanium به عنوان برای افزایش درصد موفقیت و بهبود مشخصههای رویشی نهالکاریهای فندق استفاده کرد. | ||
کلیدواژهها | ||
تغذیه نهال؛ تلقیح قارچی؛ عملکرد جنگلکاری؛ کیفیت نهال؛ مبداء بذر | ||
مراجع | ||
1.Clark, J., Hemery, G., & Savill, P. (2008). Early growth and form of common walnut (Juglans regia L.) in mixture with tree and shrub nurse species in southern England. Forestry. 81 (5), 631-644.
2.Bombeli, J., Zuccherelli, G., Zuccherelli, S., & Capaccio, V. (2002). An investigation of vegetation types and Plantation Structural with Hazelnut, Oak, and Beach in Caldra, Italy. The Malaysian Forester. 66 (1), 58-69.
3.Rostami Kia, Y., & Sharifi, J. (2019). The Fandoglu Forest is the largest common hazel forest reserve in Iran. Iran Nature. 3 (6), 90-99. 4.Hosseinzeynali, A., Abbaszadeh Dahaji, P., Alaei, H., Hosseinifard, J., & Akhgar, A. (2020). Effect of Trichoderma on growth and nutrition of pistachio trees under common garden conditions. J. of Sol Biology. 8 (2), 115-128.
5.Espahbodi, K. (2020). The a need to pay attention to seed production areas in the forest development program. Iran Nature. 5 (2), 17-21.
6.Razavi Nattaj, G. A., Asghar Fallah, A., & Mohammad Hojjati, S. M. (2020). The Incremental Assessment, Mixture Effect, Soil of Eucalyptus Camaldolensis (Dehn) and Prosopis Juliflora (Sw.) D.C. Plantations in Laleh Forest Park of Dezful. Ecology of Iranian Forests. 8 (15), 53-61.
7.Tyśkiewicz, R., Nowak, A., Ozimek, E., & Jaroszuk-Ściseł, J. (2022). Trichoderma: The current status of its application in agriculture for the biocontrol of fungal phytopathogens and stimulation of plant growth. International J. of Molecular Sciences. 23 (4), 2329.
8.Rostamikia, Y., Tabari Kouchaksaraei, M., Asgharzadeh, A., & Rahmani, A. (2018). Effect of cold stratification on seed germination traits in three ecotypes of hazelnut (Corylus avellana L.). Forest and Wood Products. 71 (1), 1-12.
9.Teimouri, M., Khoshnevis, M., Sadegzadeh Hallaj, M. H., Alizadeh, T., Matinizadeh, M., & Pourhasehemi, M. (2018). Studying the application of growth-promoting rhizobacteria in the rehabilitation of oak forests (Case study: Garan research station, Marivan). Iranian J. of Forest. 10 (3), 361-371.
10.Gajera, H., Domadiya, R., Patel, S., Kapopara, M., & Golakiya, B. (2013). Molecular mechanism of Trichoderma as bio-control agents against phytopathogen system–a review. Current Research in Microbiology and Biotechnology. 1 (4), 133-142.
11.Fani, S. R., Ghahderijani, M., Moghaddam, M., Sherafati, A., Moghaddam, M., Sedaghati, E., & Khodaygan, P. (2013). Efficacy of native strains of Trichoderma harzianum in biocontrol of pistachio gummosis. Iranian J. of Plant Protection Science. 44 (2), 243-252.
12.Niu, B., Wang, W., Yuan, Z., Sederoff, R. R., Sederoff, H., Chiang, V. L., & Borriss, R. (2020). Microbial interactions within multiple-strain biological control agents impact soil-borne plant disease. Frontiers in Microbiology. 11, 585404.
13.Vinale, F., Sivasithamparam, K., Ghisalberti, E. L., Woo, S. L., Nigro, M., Marra, R., Lombardi, N., Pascale, A., Ruocco, M., & Lanzuise, S. (2014). Trichoderma secondary metabolites are active on plants and fungal pathogens. The Open Mycology J. 8 (1), 127-139.
14.Nieto-Jacobo, M. F., Steyaert, J. M., Salazar-Badillo, F. B., Nguyen, D. V., Rostás, M., Braithwaite, M., De Souza, J. T., Jimenez-Bremont, J. F., Ohkura, M., & Stewart, A. (2017). Environmental growth conditions of Trichoderma spp. affects indole acetic acid derivatives, volatile organic compounds, and plant growth promotion. Frontiers in plant science. 8, 102.
15.Jaroszuk-Ściseł, J., Kurek, E., & Trytek, M. (2014). Efficiency of indoleacetic acid, gibberellic acid, and ethylene synthesized in vitro by Fusarium culmorum strains with different effects on cereal growth. Biologia. 69, 281-292.
16.Fu, S. F., Wei, J. Y., Chen, H. W., Liu, Y. Y., Lu, H. Y., & Chou, J. Y. (2015). Indole-3-acetic acid: A widespread physiological code in interactions of fungi with other organisms. Plant signaling & behavior. 10 (8), e1048052.
17.Adams, P., De-Leij, F. A., & Lynch, J. (2007). Trichoderma harzianum Rifai 1295-22 mediates growth promotion of crack willow (Salix fragilis) saplings in both clean and metal-contaminated soil. Microbial ecology. 54, 306-313.
18.Halifu, S., Deng, X., Song, X., & Song, R. (2019). Effects of two Trichoderma strains on plant growth, rhizosphere soil nutrients, and fungal community of Pinus sylvestris var. mongolica annual seedlings. Forests. 10 (9), 758.
19.Talbi, Z., Chliyeh, M., Mouria, B., El Asri, A., Ait Aguil, F., Ouazzani Touhami, A., Benkirane, R., & Douira, A. (2016). Effect of double inoculation with endomycorrhizae and Trichoderma harzianum on the growth of carob plants. IJAPBC. 5 (1), 44-58.
20.Nazeri, M., Tabatabaie, S., & Sharafi, Y. (2023). Evaluation of yield and quality of peach fruit (Prunus persica var Red Top) cultivated under a split roots system, inoculated with fungi, and irrigated with different levels. J. of Horticultural Science. 37 (1), 105-119.
21.International Seed Testing Association (ISTA). (2008). International rules for seed testing. Seed Science and Technology. 13, 300-520.
22.Arias, D., Calvo-Alvarado, J., & Dohrenbusch, A. (2007). Calibration of LAI-2000 to estimate leaf area index (LAI) and assessment of its relationship with stand productivity in six native and introduced tree species in Costa Rica. Forest Ecology Management. 247, 185-193.
23.Jackson, M. (1958). Soil chemical analysis prentice Hall. Inc., Englewood Cliffs, NJ. 498, 183-204.
24.Issac, R., & Johnson, W. (1975). Collaborative study of wet and dry techniques for the elemental analysis of plant tissue by Atomic Absorption Spectrophotometer. J AOAC. 58, 436.
25.Ginwal, H. S., Phartyal, S. S., Rawat, P. S., & Srivastava, R. L. (2005). Seed source variation in morphology, germination, and seedling growth of Jatropha curcas Linn. in central India, Silvae Genetica. 54 (2), 76-80.
26.Norcini, J. G., Aldrich, J. H., & Martin, F. G. (2001). Seed source effects on growth and flowering of Coreopsis lanceolata and Salvia lyrata. J. of Environmental Horticulture. 19 (4), 212-215.
27.Mataji, A., Abdi, F., Etemad, V., & Kiadaliri, H. (2016). Effects of seed origin on survival morphology and growth of Iranian oak (Quercus brantii Lindl.). Iranian J. of Forest. 8 (1), 11-22.
28.Shahzad, Z., & Amtmann, A. (2017). Food for thought: how nutrients regulate root system architecture. Current Opinion in Plant Biology. 39, 80-87. | ||
آمار تعداد مشاهده مقاله: 176 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 158 |