
تعداد نشریات | 13 |
تعداد شمارهها | 626 |
تعداد مقالات | 6,517 |
تعداد مشاهده مقاله | 8,746,928 |
تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 8,317,526 |
بررسی اثر انواع محیط کشت بر ریزازدیادی سرو کهنسال ابرکوه (Cupressus sempervirens L. var. horizontalis ) | ||
پژوهشهای علوم و فناوری چوب و جنگل | ||
مقاله 2، دوره 25، شماره 4، اسفند 1397، صفحه 19-34 اصل مقاله (1.1 M) | ||
نوع مقاله: مقاله کامل علمی پژوهشی | ||
شناسه دیجیتال (DOI): 10.22069/jwfst.2019.15248.1756 | ||
نویسندگان | ||
الهه زمانی1؛ مریم دهستانی اردکانی* 2؛ کاظم کمالی علی آباد3 | ||
1دانشجوی کارشناسی ارشد گروه علوم باغبانی دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه اردکان، ایران. | ||
2استادیار گروه علوم باغبانی دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه اردکان، یزد، ایران. | ||
3استادیار گروه علوم خاکشناسی دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه یزد، ایران | ||
چکیده | ||
سابقه و هدف: سرو ابرکوه (Cupressus sempervirens L. var. horizontalis (Mill) Gord) از کهنسالترین درختان دنیا میباشد. از آنجا که این گیاه طی زندگی طولانی خود، شرایط محیطی نامساعد زیادی را تحمل نموده است، لذا در صورت ازدیاد این گنجینه ارزشمند، میتوان جمعیت گیاهی زیادی را با توانایی مقاومت به شرایط نامساعد محیطی تولید نمود. یکی از بهترین روشهای نگهداری، حفظ و ازدیاد گیاهان در حال انقراض و کمیابی همچون این گیاه، کشت بافت آن است. پژوهش حاضر به منظور تعیین بهترین محیط کشت و غلظت بنزیل آدنین (BA) در تکثیر درون شیشهای سرو ابرکوه انجام شد. مواد و روشها: در این پژوهش، هفت محیط کشتها شامل موراشیک و اسکوگ (MS) و انواع محیط کشت MS تغییریافته شامل ½ MS، ¾ MS، MS بدون نیترات آمونیوم (NH4NO3)، MS با نصف مقدار منابع نیتروژن (KNO3, NH4NO3)، MS با ویتامین تغییریافته گروه 1 و 2 همراه با سه غلظت BA (صفر، 1/0 و 1 میلیگرم در لیتر) در مرحله استقرار و پنج غلظت (صفر، 1، 5/1، 2 و 5 میلیگرم در لیتر) در مرحله پرآوری استفاده گردید. آزمایشها در هر دو مرحله بهصورت فاکتوریل و در قالب طرح کاملاً تصادفی با پنج تکرار مورد بررسی قرار گرفتند. یافتهها: در مرحله استقرار، بیشترین رشد طولی و کمترین درصد قهوهای (53/14 درصد) شدن در محیط کشت ½ MS حاصل شد. همه محیطهای کشت مورد استفاده در مرحله استقرار به جز MS با نصف مقدار منابع نیتروژنی منجر به حفظ سبزینگی ریزنمونهها شدند. با افزایش غلظت BA، طول شاخساره بهطور معنیداری افزایش یافت. بهطوری که بیشترین رشد طولی در محیطهای کشت حاوی 1 میلی-گرم در لیتر BA بهدست آمد. در تمام محیطهای کشتی که میزان نیتروژن تغییر یافته یا حذف شده بود، میزان رشد طولی و تولید شاخساره بهطور معنیداری نسبت به سایر محیطهای کشت کاهش یافت. در مرحله پرآوری، بیشترین تعداد شاخه و رشد طولی در محیط کشت ½ MS حاوی 2 میلیگرم در لیتر BA و بیشترین درجه سبزینگی در ریزنمونههای کشت شده در محیطهای کشت MS و ½ MS حاصل شد. بر اساس نتایج مشخص شد که با افزایش غلظت BA در مرحله پرآوری، طول و تعداد شاخساره بهطور معنیداری افزایش یافت، در حالیکه درجه سبزینگی بهطور معنیداری کاهش یافت. نتیجهگیری: بهطور کلی، میزان پرآوری، طول و تعداد شاخساره به میزان قابل توجهی به مقدار مواد غذایی دریافتی و نوع محیط کشت وابسته است. بنابر نتایج حاصل از این پژوهش، جهت ریزازدیادی سرو ابرکوه محیط کشت ½ MS حاوی 1 میلیگرم در لیتر BA در مرحله استقرار و 2 میلیگرم در لیتر BA در مرحله پرآوری، توصیه میگردد. | ||
کلیدواژهها | ||
بنزیل آنین؛ شاخساره؛ قهوهای شدن؛ کشت درون شیشهای؛ MS تغییر یافته | ||
مراجع | ||
1. Abbasian, Z., Zamani, S., Movahedi, S., and Sayed Tabatabaei, B.E. 2010. In vitro micropropagation of Yew (Taxus Baccata) and production of plantlets. Biotechnology. 9 (1): 48-54. 2. Aguiar, A.V., de Valderes, A.S., Fritzsons, E., and Junior, J.A.P. 2011. Programa de melhoramento de Pinus da Embrapa Florestas. Embrapa Florestas. 3. Al-Ramamneh, E.A., Daradkeh, N., Rababah, T., Pacurar, D., and Al-Qudah, M. 2017. Effects of explant, media and growth regulators on in vitro regeneration and antioxidant activity of Juniperus phoenicea. Australian Journal of Crop Science. 11(7): 828-837. 4. Alvarez, J.M., Majada, J., and Ordas, R.J. 2009. An improved micropropagation protocol for maritime pine (Pinus pinaster) isolated cotyledons. Forestry. 10: 175-184. 5. Behjat Sasan, B., Omidi, M., Naghavi, M. R., Hariri Akbari, F., Kalate Jari, S., Shafiee, M., and Shafiee, M. 2014. Effect of explants, salts concentration medium and hormone treatments on Taxus baccata in vitro culture. International Journal of Biosciences. 5(6): 1-9. 6. Bhojwani, S.S., and Dantu, P.K. 2013. Plant tissue culture: an introductory text. India: Springer. Pp: 245-274. 7. Bonga, J.M., and aderkas, P.V. 1992. In vitro culture of tree. Kluwer Academic Publishers, Dordereht, 232p. 8. Carrier, D.J., Cosentino, G., Neufeld, R., Rho, D., and Weber, M. 1990. Nutritional and hormonal requirements of Ginkgo biloba embryo-derived callus and suspension cell culture. Plant Cell Report. 8: 635-638. 9. Chalupa, V. 2002. In vitro propagation of mature trees of Sorbus aucoparia L. and field performance of micropropagated trees. Journal of Forest Science. 48: 529-535. 10. Conde, P., Sousa, A., Costa, A., and Santos, C. 2008. A protocol for Ulmus minor mill. micropropagation and acclimatization. Plant Cell, Tissue and Organ Culture. 92 (1): 113-119. 11. Ghamari Zare, A., Sedaghati, M., Imam, M., Assareh, M., and Kiarostami, Kh. 2013. Eucalyptus micromicropropagation from adult rootstock via in vitro culture. Journal of Forest and Poplar Research. 21 (3): 593-581. (In Persian) 12. Irannejad Parizi, M., Akbari, H., Khoshnevis, M., Shams, J., Abedinin, T., Hadirad, M., Rasouli, A., Taheri, A., and Mahdavi, M. 2016. National Monument of Abarkooh cypress. Yazd university publication. 308p. (In Persian). 13. Khoshnevis, M., Matinizade, M., Shirvani, A., and Taimouri, M. 2017. Iran treasure of ancient trees. Nature of Iran, 2 (3): 42-55. (In Persian). 14. Lapeña, L., Pérez-Bermúdez, P., and Segura, J. 1992. Factors affecting shoot proliferation and vitrification in Digitalis obscura cultures. In Vitro–Plant. 28(3): 121-124. 1991 ) 15. Mihaljevic, S., Bjedou, I., Kovac, M., Levanic, D.L., and Jelaska, S. 2002. Effect of explants source and growth regulators on in vitro callus growth of Taxus baccata L. Washingtonii. Food Technology and Biotechnology. 40(4): 299-303. 16. Murashige, T., and Skoog, F. (1962). A revised medium for rapid growth and bio-assays with tobacco tissue cultures. Physiology Plant. 15: 473-497. 17. Omidi, M., Behjat Sasan, B., Naghavi, M., Kalate Jari, S., and Etminan, A. 2011. Effect of growth regulators, medium and explant on callus induction in Taxus baccata L. Iranian Journal of Medicinal and Aromatic Plants. 27 (2): 316-325. doi: 10.22092/ijmapr.2011.6447. (In Persian) 18. Roshan-Zamir, N.A., Shan, S.T., Muhammad, T., and Shan, S.A. 2007. In vitro regeneration of guava (Psidium guajava L.) from shoot tip of mature tree. Pakistanian Journal of Botany. 39: 2395-2398. 19. Rugini, E.,1984. In vitro propagation of some olive (Olea europaea L. var. sativa) cultivars with different root-ability, and medium development using analytical data from developing shoots and embryos. Sci Hort. 24: 123-134. 20. Selby, C., and Harvey, B.M.R. 1990. The influence of composition of the basal medium on the growth and morphogenesis of cultured sitka spruce (Picea sitchensis) tissues. Annals of Botany. 65(4): 395-407. 21. Shafea, L., Saffari, M., Emam, Y., and Mohammadinejad, G. 2011. Effect of nitrogen and zinc fertilizers on leaf zinc and chlorophyll contents, grain yield and chemical composition of two maize (Zea mays L.) hybrids. Seed and Plant Production Journal. 27 (2): 235-246. (in Persian) 22. Spanos, K.A., Pirrie, A., and Woodward, S. 1997. Micropropagation of Cupressus sempervirens L. and Chamaecyparis lawsoniana (A. MURR.) PAR. Silvae Genetica. 46 (5): 291-295. 23. Zhang, H., Horgan, K.J., Reynolds, P.H., and Jameson, P.E. 2010. 6-Benzyladenine metabolism during reinvigoration of mature Pinus radiata buds in vitro. Tree physiology. 30(4): 514-526. | ||
آمار تعداد مشاهده مقاله: 943 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 657 |