| تعداد نشریات | 14 |
| تعداد شمارهها | 688 |
| تعداد مقالات | 7,127 |
| تعداد مشاهده مقاله | 11,350,839 |
| تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 10,284,787 |
اثر پروهگزادیون-کلسیم و منبع ;ربن (ساکارز و مانیتول) روی ریزغدهزایی سیبزمینی رقم آگریا | ||
| پژوهشهای تولید گیاهی | ||
| مقاله 4، دوره 33، شماره 2، تیر 1405، صفحه 73-91 اصل مقاله (887.42 K) | ||
| نوع مقاله: مقاله کامل علمی پژوهشی | ||
| شناسه دیجیتال (DOI): 10.22069/jopp.2025.23214.3228 | ||
| نویسندگان | ||
| صابر لطفی1؛ علیرضا مطلبی آذر* 2؛ فریبرز زارع نهندی3؛ بهرام دهدار4؛ امین جهانیان5؛ فاطمه شریعت6 | ||
| 1دانشآموخته کارشناسیارشد علوم باغبانی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه تبریز، ایران. | ||
| 2نویسنده مسئول، استاد گروه علوم باغبانی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه تبریز، ایران. | ||
| 3استاد گروه علوم باغبانی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه تبریز، ایران | ||
| 4هیئت علمی مرکز تحقیقات کشاورزی، اردبیل، ایران | ||
| 5دانشآموخته دکتری علوم باغبانی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه تبریز، ایران | ||
| 6کارشناس آزمایشگاه، گروه بیوتکنولوژی کشاورزی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه تبریز، ایران. | ||
| چکیده | ||
| چکیده سابقه و هدف: پروهگزادیون-کلسـیم (ProCa) به عنوان ترکیب بازدارنده شیمیایی و یک مهـارکننـده بیوسـنتز هورمون جیبرلین است که سـمیت کـم و پایـداری محـدود دارد. در شرایط کشت بافت سیبزمینی، منبع کربن برای القاء غدهزایی و تکامل ریزغده ضروری میباشد. استفاده از روش کشت بافت موجب افزایش محصول سیبزمینی، کاهش هزینه تولید، کاهش ابتلا به بیماریها وکاربرد سموم شده است، تولید ریزغده از گیاهچه در شرایط درون شیشهای این امکان را فراهم میکند تا ضریب تکثیر افزایش یافته و غدههای عاری از ویروس تولید شود. مواد و روشها: این پژوهش با هدف بررسی ریزغدهزایی درون شیشه ای سیبزمینی (رقم آگریا) در واکنش به اثر پروهگزادیون کلسیم و منبع کربن ساکارز و مانیتول انجام گرفت. در این آزمایش منبع کربن ( 80گرم بر لیتر ساکارز و مانیتول) و پروهگزادیون کلسیم (در غلظتهای 0، 3، 6 و 9 میلی گرم بر لیتر) در محیط کشت پایه MS بصورت آزمایش فاکتوریل در قالب طرح کاملاً تصادفی با 8 تیمار و 4 تکرار اجرا شد. پس از سه ماه از تاریخ کشت ریز نمونهها، یادداشتبرداری نهایی صفات انجام گرفت. در مرحله ریزغدهزایی صفات وزن کل ریزغده یا همان عملکرد (گرم بر تعداد کل ریزغده هر تیمار)، تعداد ریزغده، درصد دورمانسی ریزغده، تعداد ریزغده ثانویه، تعدادساقه روی ریزغده بدون دورمانسی، طول ساقه روی ریزغده بدون دورمانسی، طول و عرض ریزغدهها (میلیمتر)، تعداد ریشه روی ریزغده و میانگین وزنتر ریزغده از صفات مورد نظر بودند. یافتهها: نتایج نشان داد تیمارهای 3 و 6 میلیگرم در لیتر پروهگزادیون کلسیم به تر تیب با 4 و 83/2 عدد ریزغده بیشترین تعداد ریزغده را تولید کردند و اختلاف معنیداری را از یکدیگر نشان ندادند. همچنین تیمارهای شاهد و پروهگزادیون کلسیم در غلظت 9 میلیگرم در لیتر با 17/1 عدد ریزغده کمترین تعداد ریزغده را تولید کرد. همچنین در تمامی غلظتهای پروهگزادیون کلسیم، ساکارز نسبت به مانیتول ریزغدههای با طول و عرض بیشتر تولید کرد. تیمار 3 میلیگرم در لیتر پروهگزادیون کلسیم همراه با ساکارز 80 گرم بر لیتر با 66/5 عدد چشم بیشترین تعداد چشم را تولید کرد و با بقیه تیمارها اختلاف معنیدار را نشان داد. تیمار 3 میلیگرم در لیتر پروهگزادیون کلسیم همراه با ساکارز 80 گرم در لیتر با 66/2 گرم ریزغده در تیمار بیشترین عملکرد را در بین تیمارها تولید نمود. نتیجهگیری: با نگاه کلی به نتایج این تحقیق میتوان نتیجه گرفت که منبع کربن ساکارز برای ریزغدهزایی نسبت به مانیتول بهتر است و در میان غلظتهای پروهگزادیون کلسیم نیز غلظت 3 میلیگرم در لیتر نسبت به غلظتهای بالاتر نتایج بهتری را نشان داد و این غلظت پروهگزادیون کلسیم همراه با 80 گرم در لیتر ساکارز برای تولید ریزغده نتایج مثبت و بهتری را نشان داد. | ||
| کلیدواژهها | ||
| کند کننده رشد؛ ریزنمونه؛ محیط کشت؛ جیبرلین | ||
| مراجع | ||
|
1.Mahmodi Soreh, S., Motallebi Azar, A., Panahandeh, J., Gohari, G., & Jahanian, A. (2023). Effect of Glycine Betaine Nanocomposite Coated with Chitosan and Moderate Salinity Stress on In vitro Microtuberization of Potato (Solanum tuberosum L.) cv. Agria. Journal Of Horticultural Science, 37(2), 437-451. https://doi.org/10.22067/jhs.2022.76343.1165. 2.Kim, J., Soh, S. Y., Bae, H., & Nam, S. Y. (2019). Antioxidant and phenolic contents in potatoes (Solanum tuberosum L.) and micropropagated potatoes. Applied Biological Chemistry, 62(1). https:// doi.org/ 10.1186/ s13765-019-0422-8. 3.Dobránszki, J., Magyar-Tábori, K., & Hudák, I. (2008). In vitro tuberization in hormone-free systems on solidified medium and dormancy of potato microtubers. Fruit, vegetable and cereal science and Biotechnology, 2(1), 82-94. 4.Gami, R. A., Parmar, S. K., Patel, P. T., Tank, C. J., Chauhan, R. M., Bhadauria, H. S., & Solanki, S. D. (2013). Microtuberization, minitubers formation and in vitro shoot regeneration from bud sprout of potato (Solanum tuberosum L.) cultivar K. badshah. African Journal of Biotechnology, 12(38). 5.Cenzano, A., Abdala, G., & Hause, B. (2007). Cytochemical immuno-localization of allene oxide cyclase, a jasmonic acid biosynthetic enzyme, in developing potato stolons. Journal of plant physiology, 164(11), 1449-1456. 6.Jafari, F., Panahandeh, J., Motallebi-azar, A. R., & Torabie-Giglou, M. (2019). Response of potato’s cultivars and promising clones to osmotic and temperature stress under in vitro conditions. Iranian Journal of Horticultural Science, 50(3), 633-648. https://doi.org/10.22059/ijhs.2018.257388.1447. 7.Motallebi-Azar, A., & Kazemiani, S. (2015). The study of carbon sources efficiency on in vitro potato. Horticulture, Biology and Environment South Western Journal of, 4(1), 66-81. 8.Yu, W. C., Joyce, P. J., Cameron, D. C., & McCown, B. H. (2000). Sucrose utilization during potato microtuber growth in bioreactors. Plant Cell Reports, 19(4), 407-413. 9.Askari, N. (2024). Evaluation of Sucrose Benefits to Tuberization in ‘Sante’Potato Cultivar in vitro. International Journal of Horticultural Science and Technology, 11(4), 437-444. 10.Garner, N., & Blake, J. (1989). The induction and development of potato microtubers in vitro on media free of growth regulating substances. Annals of Botany, 63(6), 663-674. 11.Sharma, S., Chanemougasoundharam, A., Sarkar, D., & Pandey, S. K. (2004). Carboxylic acids affect induction, development and quality of potato (Solanum tuberosum L.) microtubers grown in vitro from single-node explants. Plant Growth Regulation, 44(3), 219-229. 12.Meng, L., Zhang, T., Chen, Y., Zhang, Y., Wang, X., Qin, J., & Meng, M. (2020). The influence of endogenous sugar on potato tuberization in in vivo conditions. American Journal of Potato Research, 97, 297-307. 13.Belguendouz, A., Kaide Harche, M., & Benmahioul, B. (2021). Evaluation of different culture media and activated charcoal supply on yield and quality of potato microtubers grown in vitro. Journal of Plant Nutrition, 44(14), 2123-2137. 14.Leva, A., Sadeghi, H., & Petruccelli, R. (2013). Carbohydrates modulate the in vitro growth of olive microshoots. I. The analysis of shoot growth and Branching patterns. Journal of Plant Growth Regulation, 32, 53-60. 15.Ghasemi, R., Motallebiazar, A., Panahirad, S., & Jahanian, A. (2024). Effect of proline nanocomposite coated with chitosan and moderate salinity stress on in vitro microtuberization of potato (Solanum tuberosum L.) cv. Agria. Plant Productions, 47(1), 117-130. https:// doi.org/ 10.22055/ ppd.2023. 43532.2097. 16.Motallebiazar, A., Abbaspour khajeh, M., Panahandeh, J., Tarinejad, A., Jahanian, A., & Kahnamoi, A. (2023). The Effect of Graphene Oxide and Putrescine on In Vitro Microtuberization of Potato (Solanum tuberosum) cv. Agria at Nitrogen (NH4NO3) Deficiency Stress. Agricultural Biotechnology Journal, 15(3), 77-96. https://doi.org/ 10.22103/ jab.2023.19279.1394. 17.Gopal, J., Chamail, A., & Sarkar, D. (2004). In vitro production of microtubers for conservation of potato germplasm: effect of genotype, abscisic acid, and sucrose. In Vitro Cellular & Developmental Biology-Plant, 40(5), 485-490. 18.Borna, R. S., Hoque, M., & Sarker, R. (2019). In vitro Microtuber Induction and Regeneration of Plantlets from Microtuber Discs of Cultivated Potato (Solanum tuberosum L.). Plant Tissue Culture and Biotechnology, 29(1), 63-72. https://doi.org/10.3329/ ptcb.v29i1.41979. 19.Feng, N., Yu, M., Li, Y., Jin, D., & Zheng, D. (2021). Prohexadione-calcium alleviates saline-alkali stress in soybean seedlings by improving the photosynthesis and up-regulating antioxidant defense. Ecotoxicology and environmental safety, 220, 112369. 20.Deng, R., Li, Y., Feng, N. J., Zheng, D. F., Du, Y. W., Khan, A., Xue, Y. B., Zhang, J. Q., & Feng, Y. N. (2024). Integrative Analyses Reveal the Physiological and Molecular Role of Prohexadione Calcium in Regulating Salt Tolerance in Rice. International Journal of Molecular Sciences, 25(16), 9124. 21.Altintas, S. (2011). Effects of prohexadione-calcium with three rates of phosphorus and chlormequat chloride on vegetative and generative growth of tomato. African Journal of Biotechnology, 10(75), 17142-17151. 22.Kang, S. M., Kim, J. T., Hamayun, M., Hwang, I. C., Khan, A. L., Kim, Y. H., Lee, J. H., & Lee, I. J. (2010). Influence of prohexadione-calcium on growth and gibberellins content of Chinese cabbage grown in alpine region of South Korea. Scientia Horticulturae, 125(2), 88-92. 23.Oliveira, L. S. de, Fernandes, A. M., Soratto, R. P., Han, D., & Silva, R. M. D. (2021). Shoot growth, tuber yield and quality of two potato cultivars as affected by prohexadione-calcium application. Revista Ceres, 68, 411-419. 24.Mungai, S. W., Cornelius M. W., & Mwashasha R. M. (2023). Effect of in vitro calcium fortification on regeneration and microtuberization of three selected irish potato varieties. International Journal of Horticultural Science and Technology, 10(4), 433-444. 25.Ghadimi-Garkeroodi, P., Zaare-Nahandi, F., Motalebi Azar, A., & Dadpour, M. R. (2016). Optimization of in vitro microtuberization of potato (Solanum tuberosum L. cv. Agria) using paclobutrazole and uniconazol. Iranian Journal of Horticultural Science, 47(2), 213-220. https://doi.org/ 10.22059/ijhs.2016.58521. 26.Yagiz, A. K., Yavuz, C., Tarim, C., Demirel, U., & Caliskan, M. E. (2020). Effects of Growth Regulators, Media and Explant Types on Microtuberization of Potato. American Journal of Potato Research, 97(5), 523-530. https://doi. org/10.1007/s12230-020-09801-4. | ||
|
آمار تعداد مشاهده مقاله: 309 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 55 |
||